实验技巧
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怎样避免同源荧光双标串色?

同源荧光双标是一种新型荧光分子标记技术,其无论在生物医学领域还是生物化学领域都具有广泛的应用前景。在生物学研究中,常常需要对生物分子进行标记以便于定位和观察,而同源荧光双标技术则为我们提供了一个高效且可靠的标记选择.

在同源荧光双标实验中,各位小伙伴有没有遇到串色问题呢?是否有过疑问:同源荧光双标串色正常吗同源荧光双标为什么会串色等问题.九游国际生物今天就以实验室多年实验经验分享给大家!

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什么叫荧光双标串色?


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一般在两种或两种以上荧光素之间,如果荧光发射峰很近,那么荧光光谱彼此会有部分重叠,检测时可能出现一种荧光素的信号扩散到另一荧光通道的情况,这种现象称为串色或荧光光谱交叉(crosstalk)。

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串色的原因以及规避串色的建议分享
1.使用几种荧光素时,尽量选择相互之间无光谱交叉的荧光素。
2. 降低标记荧光强度:我们一般认为样品的一种或几种荧光强度太高,有时会导致光谱交叉出现。建议采用降低标记物浓度、缩短标记时间及调整荧光素介质等方法可降低样品荧光强度。
3. 选用酪酰胺信号放大技术(TSA)是一种比较有效的避免串色的常见方法,其原理在于:酪胺Tyramide的过氧化物酶反应(已标记荧光的酪胺在HRP催化H2O2下形成共价键结合位点)产生的大量酶促产物与目标蛋白的酪氨酸残基共价结合,从而使目标蛋白标记上特异的荧光或生物素。并且信号强度是进行过放大的,这种底物和显色试剂结合后更容易被捕获,且不易被洗脱。
4.选择合适的封闭液,可以有效降低背景光和非特异性着色,常见的封闭液有山羊血清和BSA(牛血清白蛋白)
5.合理的调整一抗或者荧光素添加的顺序。
6.根据一抗选择合适的修复液以及修复条件,建议参考官网或者咨询网站i-tries.com的修复条件,根据实际情况调整实验方案。

同源荧光双标实验流程及步骤

样本前处理

(1)石蜡切片

脱蜡:将切片依次浸泡于二甲苯1(15min)、二甲苯2(15min)、无水乙醇1(5min)、无水乙醇2(5min)、95%乙醇(5min)、85%乙醇(5min)、75%乙醇(5min),最后用水漂洗片子。


(2)冰冻切片

组织固定:切片稍晾干 ,用通用组织固定液室温固定15min,取出切片水洗。



实验步骤


1.抗原修复

抗原修复通常使用1×柠檬酸(PH6.0)作为修复液,高温高压修复,将切片至于高压锅中,加入适量的修复液,关上高压锅,待冒起后计时,计时2min,冷却至室温,修复完毕。如遇表达较弱的指标,则可用EDTA(PH9.0)作为修复液进行抗原修复。

如遇骨组织脑组织等易掉片组织,则采用微波修复或者胰蛋白酶修复,修复温度控制在80℃以下,修复液可用2×柠檬酸(PH6.0),自然冷却。


2.内源性酶阻断

组化笔画圈圈住组织,将3%过氧化氢溶液滴加在切片上,一片组织约50ul染液,于室温孵育20min。


3.血清封闭

采用与一抗不同来源的血清(通常使用10%山羊血清)进行封闭,37℃孵育30min。


4.一抗孵育

使用抗体稀释液按照一定浓度稀释一抗(参考抗体官网或者咨询i-tries.com),4℃过夜孵育或者37℃孵育2h。


5.二抗孵育(使用与一抗同来源标记的二抗)

滴加与一抗同来源标记的二抗,每张切片滴加50ul二抗即可,37℃孵育1h。


6.孵育TSA试剂

使用TSA buffer稀释TYR-488,在组织上滴加稀释好的TYR-488,37℃孵育30min,再用PBS洗涤3次,每次5min。


7.抗原修复

将玻片至于1×柠檬酸中,放入微波炉高火修复5min,冷却至室温。


8.血清封闭

采用与一抗不同来源的血清(通常使用10%山羊血清)进行封闭,37℃孵育30min。


9.一抗孵育

使用抗体稀释液按照一定浓度稀释一抗(参考抗体官网),4℃过夜孵育。


10.二抗孵育(使用与一抗同来源标记的二抗)

荧光素名称最大激发波长(nm)最大发射波长
(nm)
图片颜色
TYR-555(CY3)550
570
红色
TSA-488490
520绿色

滴加与一抗同来源标记的二抗,每张切片滴加50ul二抗即可,37℃孵育1h。


11.孵育TSA试剂

使用TSA buffer稀释TYR-555(CY3),在组织上滴加稀释好的TYR-555(CY3),37℃孵育30min,再用PBS洗涤3次,每次5min。


12.DAPI染核

DAPI工作液滴加到组织上,每张切片100ul左右,室温孵育-2-5 min,再用PBS洗涤3次,每次5min。将液体甩干,在组织上滴加抗荧光封片剂,盖上盖玻片。将做好的荧光片子至于4℃避光保存。

图片展示:


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